Las tinciones más utilizadas en el laboratorio de micología utilizan el reactivo fluorescente blanco de calcoflúor, azul de lactofenol y las preparaciones con tinciones de Gram o de Giemsa. >El blanco de calcoflúor tiñe las paredes celulares de los hongos haciendo que emitan fluorescencia, lo que hace posible su detección de forma más fácil y rápida. Lo debemos leer utilizando un microscopio de fluorescencia. >El azul de lactofenol es una tinción simple, es decir, se emplea un sólo colorante y como tal está basada en la afinidad de este colorante por las estructuras fúngicas. Está preparado utilizando 3 compuestos: fenol, ácido láctico y azul de algodón. El fenol desactiva las enzimas líticas en la célula e impide que ésta se rompa. Además, actúa como mordiente cuando se usa en combinación con colorantes. El ácido láctico preserva las estructura fúngicas al provocar un cambio de gradiente osmótico entre el interior y el exterior de dicha estructura. El azul de algodón es un colorante ácido, que tiñe el citoplasma y la quitina presente en las células fúngicas, especialmente las hifas y los conidios.
Publicación de Agustina S.
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La coloracion de May-Grŭnwald Giemsa combina las técnicas de coloración desarrolladas por May-Grünwald y Giemsa. Estas, se basan en el empleo de dos soluciones colorantes diferentes. La solución de May-Grünwald, que contiene el colorante aniónico eosina y el colorante catiónico azul de metileno ambos disueltos en metanol y la solución de Giemsa, compuesta de eosina, azul de metileno y una serie de productos de la oxidación de este último tales como el azur A, el azur B, el violeta de metilo y el azul de metilo. El agua/buffer añadida en los pasos anteriormente mencionados, hace que los colorantes se ionizen adquiriendo afinidad por diferentes constituyentes celulares que luego recibirán sus nombres en base a esta característica. Los componentes celulares de naturaleza aniónica (ácida) se unen selectivamente a los tintes catiónicos tiñéndose en variados tonos de azul. Estos componentes son llamados basófilos: (ADN, mitocondrias, ribosomas y citoplasma de células ricas en ARN). En cambio, los componentes celulares de naturaleza catiónica (básicos) se unen selectivamente al tinte ácido eosina, tiñéndose en variados tonos de naranja y rojo. A estos elementos se los denomina acidófilos o eosinófilos. Este es el caso de la hemoglobina, y de las proteínas contenidas en las granulaciones de los granulocitos eosinófilos.
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El puzzle de la #cuantificación de moléculas orgánicas, #biomoléculas, principios activos, #fármacos, mediante #cromatografía líquida y #espectrometría de #masas. ¿cómo llamarías a esta pieza? Hay muchas respuestas correctas y una de ellas es: Tapón de rosca corta de PP de 9 mm, azul, orificio central, septum montado y precortado Los detalles son muy importantes: Material (revestimiento) Silicona/PTFE Color Azul, Blanco Material Polipropileno Para utilizar con (aplicación) GC, HPLC Grosor 1 mm Tamaño del tapón 9 mm Diámetro de la abertura 6 mm Diámetro exterior 9 mm Precortados Sí Tapón de rosca Para utilizar con Viales con cierre de rosca de 9 mm
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🧪𝑪𝒐𝒎𝒐 𝒍𝒊𝒔𝒂𝒓 𝒂𝒅𝒆𝒄𝒖𝒂𝒅𝒂𝒎𝒆𝒏𝒕𝒆 𝒍𝒂𝒔 𝒄é𝒍𝒖𝒍𝒂𝒔 𝒚 𝒕𝒆𝒋𝒊𝒅𝒐𝒔 𝒑𝒂𝒓𝒂 𝒆𝒙𝒕𝒓𝒂𝒆𝒓 á𝒄𝒊𝒅𝒐𝒔 𝒏𝒖𝒄𝒍𝒆𝒊𝒄𝒐𝒔🧬 🧫 Si necesitas romper, homogeneizar, disociar o lisar células y muestras de tejido para extraer ácidos nucleicos de forma eficaz, equipa tu laboratorio con el homogeneizador Bullet Blender de Next Advance en combinación con las perlas de MACHEREY-NAGEL. Las perlas MN Bead Tubes son tubos de plástico con tapón de rosca de 2 o 5 ml que contienen diferentes tipos de perlas (vidrio, cerámica, acero o corindón) adaptados a cada tipo de material de partida (guía). Las perlas permiten la disrupción del material de muestra biológica y posterior purificación de los ácidos nucleicos. Se recomienda utilizarlos en combinación con el MN Bead Tube Holder o con un homogeneizador como el Bullet Blender. El homogeneizador Bullet Blender es ideal para la extracción de proteínas, ácidos nucleicos, virus, el aislamiento de moléculas pequeñas, bacterias viables y más. Las muestras, junto con el tampón y las perlas, se agitan vigorosamente en tubos de muestra individuales. Ajustando la velocidad y seleccionando el material apropiado y tamaño de las perlas, muchos tipos de células y orgánulos se pueden aislar. https://lnkd.in/dqQt8yGX #lifescience #homogeinizacion #machereynagel #nextadvance #teknovas #cultek #ddbiolab #academia #research CM Dutscher Group
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La distinción entre las bacterias Gram negativas y Gram positivas radica en la coloración que adquieren al realizar una tinción de Gram. Que adquieran una u otra coloración está íntimamente relacionado con la composición de su pared celular, su grosor y que las bacterias Gram negativas poseen una capa extra (membrana externa) que separa la pared celular de la membrana citoplasmática. Las paredes celulares de bacterias Gram negativas contienen tres componentes que se encuentran fuera de la capa de peptidoglicanos: lipoproteínas, membrana externa y lipopolisacáridos. La membrana externa es diferente desde el punto de vista químico de todas las demás membranas biológicas. Es una estructura con bicapa cuya hoja interna tiene una composición similar a la de la membrana celular mientras que la hoja externa contiene lipopolisacáridos La capacidad de la membrana externa para que excluya moléculas hidrófobas es una característica poco común entre las membranas biológicas y sirve para proteger a la célula (en el caso de bacterias entéricas) de sustancias nocivas, como las sales biliares. Por su naturaleza lipídica la membrana externa excluye moléculas hidrofílicas. Sin embargo, dicha membrana no es completamente impermeable ya que posee conductos, formados por proteínas denominadas porinas, que permiten la difusión pasiva de compuestos hidrofílicos de bajo peso molecular como azúcares, aminoácidos y ciertos iones. Al realizar cortes transversales de células Gram positivas, se observa la existencia de una gruesa pared celular que recubre la membrana plasmática. Esta capa está conformada por una capa ancha de peptidoglicanos, ácidos teicoicos, ácidos lipoteicoicos y ácidos teicurónicos. Los ácidos teicoicos de la pared (ribitol) están unidos covalentemente con el glicopéptido a la posición 6-OH del N-acetil-murámico. Estos ácidos teicoicos aportan cargas negativas netas en la superficie celular, ligan magnesio y mantienen una alta concentración de este metal en la envoltura celular. Estos iones de magnesio son necesarios para la estabilidad de la membrana celular, así como para las enzimas vinculadas con las membranas. Cuando los ácidos teicoicos se encentran aislados no son inmunogénicos, pero al combinarse con otros constituyentes celulares se vuelven componentes antigénicos superficiales en muchas bacterias Gram positivas. Los ácidos lipoteicoicos y las proteínas de adherencia son importantes factores de adherencia que facilitan la fijación a los tejidos del huésped.
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Tinciones acidorresistentes Se utilizan al menos tres tinciones acidorresistentes diferentes, cada una de las cuales aprovecha el hecho de que algunos microorganismos conservan una tinción principal incluso después de exponerlos a agentes decolorantes potentes, como mezclas de ácidos y alcoholes. El método de Ziehl-Neelsen, utilizado en micobacterias, es el más antiguo que se utiliza, aunque precisa el calentamiento de la muestra durante el procedimiento de tinción. Muchos laboratorios han sustituido este método por el de la tinción acidorresistente en frio (método de Kinyoun en parasitología) o por la tinción fluorocrómica (método de auramina-rodamina). El método del fluorocromo es la tinción de elección porque se puede estudiar rápidamente una gran superficie de la muestra simplemente buscando microorganismos fluorescentes sobre un fondo negro. Algunos microorganismos son parcialmente acidorresistentes, de manera que conservan la tinción principal solo cuando se descoloran con una solución ácida débil. Esta propiedad es característica de tan solo algunos microorganismos, lo que hace que sea bastante útil para su identificación preliminar. Tinción de Kinyoun. Cryptosporidium parvum. Fuente: https://lnkd.in/dmGUj4kh
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Tu solución dentro de la Familia Plasmafit® Vitelene® polietileno altamente entrelazado con vitamina E. Aparte del diseño del cotilo, el nuevo material de la articulación del inserto de polietileno Vitelene® juega un papel crucial en el éxito del sistema acetabular Plasmafit®. Vitelene® es un polietileno altamente entrelazado con 0,1% de antioxidante de vitamina E (α-tocoferol) y haz de electrones irradiado. Mediante la adición de vitamina E, no es necesario un tratamiento térmico. Por lo tanto, Vitelene® está protegido y las propiedades mecánicas se conservan. La estabilidad a largo plazo de Vitelene® contra la oxidación es de particular importancia clínica, ya que se correlaciona directamente con el desgaste. #CORPUSTECHNOLOGIESSPA #AESCULAP #TRAUMATOLOGIA #ARTROPLASTIA #PROTESIS #PROTESISDECADERA https://lnkd.in/eveZR9jW
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Se pueden separar e identificar cationes metálicos a través de una técnica sencilla como la cromatografía en capa delgada (TLC). Conoce como aquí y visítanos para más información de la #química y la #ciencia
Separación e identificación de cationes metálicos por cromatografia en papel
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Seguimos con el puzzle, volviendo a una pieza pequeña pero fundamental, y quedan muchas piezas, de la #cuantificación de moléculas orgánicas, #biomoléculas, principios activos, #fármacos, mediante #cromatografía líquida y #espectrometría de #masas. ¿cómo llamarías a esta pieza? Puntas de micropipeta biseladas, ajuste universal: 100-1250 μl Sin filtro Color Transparente Declaraciones de limpieza Sin ADN, ARNasa ni ADNasa Estilo de punta Biselado Volumen De 100 a 1250 μl Esterilidad No estéril Esterilizables en autoclave Longitud 89 mm
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🌱 Fotólisis o Fotodegradación de los principios activos 🔬 La transparencia de las emulsiones puede afectar el comportamiento químico de los fitoelementos agregados en un caldo. A medida que "disminuimos" el tamaño de las micelas (de macro a nano) dentro de nuestras formulaciones E.M.A.G, menor será su fotólisis. El espectro de luz UV encuentra mas "obstáculos" en micelas de mayor tamaño, no pudiendo atravezar el medio, y generando asi degradación primaria en muchos fitosanitarios. wöhr quimica #Coadyuvantes #Micelas #Nanoemulsión #Biodegradables #Fotólisis
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Los procesos de concentración de plasma para la obtención tanto de la red de fibrina como de plaquetas mediante técnicas de PRP (plasma rico en plaquetas), PRF (plasma rico en fibrina) y sus derivados, hacen imprescindible el uso de la centrifuga Plasma 22. La sencillez de estos procesos transmite de manera errónea la posibilidad de que el rendimiento de la técnica no se vea afectado por el proceso de centrifugación. Nada más alejado de la realidad; el máximo rendimiento tan solo se obtendrá con aquellos equipos que han sido validados y, en los que los parámetros de funcionamiento, más allá de R.P.M., F.C.R. y tiempo, han sido calculados para estos procesos. La centrífuga Plasma 22 ha sido desarrollada en conjunto con referentes en el desarrollo de estas técnicas y cuenta con la aprobación para el desarrollo de las mismas. Mantiene la estructura celular de las fases para la aplicación a cada una de las alternativas, asegurando que su eficacia en el entorno de destino y evitando interferencias de partículas que impidan la adhesión. Más información en https://lnkd.in/eNkcgJFm Cotice vía WhatsApp al 972 559 948 o clic aquí: https://wa.link/lgtmdh #ortoalresa #centrífuga #plasma #plaquetas #sangre #cimatecpe #laboratorio
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