—

fysieke isolatie ten opzichte van alle ander materiaal van planten of schadelijke organismen, waarbij tevens aandacht moet worden besteed aan de beheersing van de vegetatie in de omgeving,

—

aanwijzing van een contactpersoon die verantwoordelijk is voor de activiteiten,

—

reserveren van de toegang tot lokalen en inrichtingen en tot de omgeving, in voorkomend geval, voor met name genoemd personeel,

—

adequate identificatie van de lokalen en inrichtingen, met vermelding van de aard van de activiteiten en het verantwoordelijke personeel,

—

bijhouden van een register van de uitgevoerde activiteiten en een handboek met werkmethoden, waarin ook de procedures worden vermeld die moeten worden gevolgd indien schadelijke organismen uit quarantaine ontsnappen,

—

adequate veiligheids- en alarmsystemen,

—

adequate controlemaatregelen om het binnenbrengen en de verspreiding van schadelijke organismen in de lokalen te voorkomen,

—

gecontroleerde procedures voor bemonstering en overbrenging tussen lokalen en inrichtingen van materiaal,

—

indien van toepassing, gecontroleerde verwijdering van afval, grond en water,

—

adequate hygiënische en ontsmettingsmethoden en -installaties ten behoeve van het personeel, voorzieningen en -apparatuur,

—

adequate maatregelen en installaties voor het verwijderen van proefmateriaal,

—

adequate indexeringsfaciliteiten en procedures (met inbegrip van tests), en

—

bewaring in inrichtingen met een afzonderlijke kamer met toegang voor het personeel via een dubbele deur,

—

bewaring bij onderdruk,

—

bewaring in recipiënten waaruit schadelijke organismen niet kunnen ontsnappen, met adequate maaswijdten en andere hinderpalen, bij voorbeeld waterscherm voor mijten, gesloten grondcontainers voor nematoden, elektrische insectenvallen,

—

isolatie ten opzichte van andere schadelijke organismen en materiaal, bij voorbeeld virusoverbrengende plantenvoeding of gastmateriaal,

—

bewaring van veredelingsmateriaal in kweekkooien met hanteringsapparatuur,

—

geen kruising van schadelijke organismen met inheemse stammen of soorten,

—

verbod op continukweek van de schadelijke organismen,

—

bewaring onder zodanige omstandigheden dat vermenigvuldiging van het schadelijk organisme strikt wordt beheerst, bij voorbeeld onder zodanige omgevingsomstandigheden dat geen diapause kan plaatsvinden,

—

bewaring onder zodanige omstandigheden dat verspreiding van besmette deeltjes niet mogelijk is, bij voorbeeld luchtstromen moeten worden vermeden,

—

controlemethoden om te verifiëren dat de kweek van schadelijke organismen vrij is van parasieten en andere schadelijke organismen,

—

adequate controleprogramma's voor het materiaal, teneinde mogelijke vectoren te elimineren,

—

voor activiteiten in vitro: behandeling van het materiaal onder steriele omstandigheden: het laboratorium moet zijn uitgerust voor een aseptische werkwijze,

—

bewaring van schadelijke organismen die door vectoren worden overgebracht onder zodanige omstandigheden dat zij niet via de vector kunnen worden verspreid, bij voorbeeld onder gaas met adequate maaswijdte, afzondering van grond,

—

passende isolatie in bepaalde seizoenen om ervoor te zorgen dat de activiteiten worden uitgevoerd in een periode waarin er weinig risico bestaat voor de gezondheid van de planten.

a)

Citrus greening bacterium,

b)

Citrus variegated chlorosis,

c)

Citrus mosaic virus,

d)

Citrus tristeza virus (alle isolaten),

e)

Citrus vein enation woody gall,

f)

Leprosis,

g)

Naturally spreading psorosis,

h)

Phoma tracheiphila (Petri) Kanchaveli & Gikashvili,

i)

Satsuma dwarf virus,

j)

Spiroplasma citri Saglio et al.,

k)

Tatter leaf virus,

l)

Witches' broom (MLO),

m)

Xanthomonas campestris (alle voor Citrus pathogene stammen).

a)

Arabis mosaic virus,

b)

Raspberry ringspot virus,

c)

Strawberry crinkle virus,

d)

Strawberry latent „C” virus,

e)

Strawberry latent ringspot virus,

f)

Strawberry mild yellow edge virus,

g)

Strawberry vein banding virus,

h)

Strawberry witches' broom mycoplasm,

i)

Tomato black ring virus,

j)

Tomato ringspot virus,

k)

Colletotrichum acutatum Simmonds,

l)

Phytophthora fragariae Hickman var fragariae Wilcox & Duncan,

m)

Xanthomonas fragariae Kennedy & King.

i)

indien het plantaardig materiaal van oorsprong is uit een land waarvan niet bekend is dat het vrij is van een van de volgende schadelijke organismen:

moet bij het testen gebruik worden gemaakt van adequate laboratoriummethoden en, indien van toepassing, van indicatorplanten voor het opsporen van betrokken schadelijke organismen, en

ii)

ongeacht het land van oorsprong van het plantaardig materiaal, moet bij het testen gebruik worden gemaakt van adequate laboratoriummethoden en, indien van toepassing, indicatorplanten, teneinde de aanwezigheid van ten minste de volgende schadelijke organismen te kunnen opsporen:

i)

indien het plantaardig materiaal van oorsprong is uit een land waarvan niet bekend is dat het vrij is van een van de volgende schadelijke organismen:

moet bij het testen gebruik worden gemaakt van adequate laboratoriummethoden en, indien van toepassing, van indicatorplanten voor het opsporen van de betrokken schadelijke organismen, en

ii)

ongeacht het land van oorsprong van het plantaardig materiaal, moet bij het testen gebruik worden gemaakt van adequate laboratoriummethoden en, indien van toepassing, van indicatorplanten, teneinde ten minste de aanwezigheid van de volgende schadelijke organismen te kunnen opsporen:

a)

Erwinia amylovora (Burr.) Winsl. et al.,

b)

Pear decline mycoplasm.

i)

Ajinashika disease

Bij het testen wordt gebruikgemaakt van een adequate laboratoriummethode. Wanneer het resultaat negatief is, wordt het materiaal getoetst op het wijnstokras Koshu en gedurende ten minste twee vegetatiecycli geobserveerd.

ii)

Grapevine stunt virus

Bij het onderzoek wordt gebruikgemaakt van adequate indicatorplanten, onder meer het wijnstokras Campbell Early, en wordt gedurende één jaar geobserveerd.

iii)

Summer mottle

Bij het onderzoek wordt gebruikgemaakt van adequate indicatorplanten, onder meer de wijnstokrassen Sideritis, Cabernet-Franc en Mission.

a)

Blueberry leaf mottle virus,

b)

Grapevine Flavescence dorée MLO en andere vergelingsziekten van wijnstokken,

c)

Peach rosette mosaic virus,

d)

Tobacco ringspot virus,

e)

Tomato ringspot virus („yellow vein”-stam en andere stammen),

f)

Xylella fastidiosa (Well & Raju),

g)

Xylophilus ampelinus (Panagopoulos) Willems et al.

a)

Clavibacter michiganensis (Smith) Davis et al ssp. sepedonicus (Spieckermann et Kotthoff) Davis et al.,

b)

Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al.

a)

Andean potato latent virus,

b)

potato black ringspot virus,

c)

potato spindle tuber viroid,

d)

potato yellowing alfamovirus,

e)

aardappelvirus T,

f)

Andean potato mottle virus,

g)

de algemeen voorkomende aardappelvirussen A, M, S, V, X en Y (inclusief Yo, Yn en Yc) en potato leaf roll virus.

1.

Voor knollen: van elke knol het uiteinde van de hiel testen. Normaal moet een monster 200 knollen bevatten. De methode kan evenwel ook voor monsters van minder dan 200 knollen worden toegepast.

2.

Voor jonge planten en stekken, inclusief microplanten: de onderste gedeelten van de stengel en, zo nodig, de wortels van elke eenheid van het plantaardige materiaal testen.

3.

Voor het testen van vegetatief vermeerderde knollen of, voor soorten die geen knollen vormen, van de stengelbasis wordt als testtijdstip het einde van de eerste normale cyclus vegetatieve groei na de onder de punten 1 en 2 bedoelde tests aanbevolen.

4.

Voor het in punt 1 bedoelde materiaal moet voor Clavibacter michiganensis (Smith) Davis et al. ssp. sepedonicus (Spieckermann et Kotthoff) Davis et al verplicht de in bijlage I bij Richtlijn 93/85/EEG van de Raad (1) vastgestelde communautaire testmethode worden gebruikt. Voor het in punt 2 bedoelde materiaal mag deze testmethode worden gebruikt.

5.

Voor het in punt 1 bedoelde materiaal moet voor Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. verplicht de onderzoekmethode worden gebruikt die is beschreven in bijlage II bij Richtlijn 98/57/EG van de Raad (2). Voor het in punt 2 bedoelde materiaal mag deze testmethode worden gebruikt.

1.

De minimale tests voor vegetatief materiaal (knollen, jonge planten en stekken, inclusief microplanten) moeten een serologische test omstreeks het tijdstip van de bloei omvatten voor elke van de in de lijst genoemde schadelijke organismen, met uitzondering van potato spindle tuber viroid, gevolg door een toetsplantenonderzoek wanneer het materiaal een negatieve uitkomst oplevert bij de serologische test. Voor het potato leaf roll virus moeten twee serologische tests plaatsvinden.

2.

Voor aardappelzaad moet minimaal een serologische test of, als geen serologische test beschikbaar is, een toetsplantenonderzoek worden uitgevoerd. Het verdient ten zeerste aanbeveling om een deel van de negatief testende monsters opnieuw te testen en bij twijfelachtige resultaten een andere testmethode te gebruiken.

3.

De onder de punten 1 en 2 bedoelde serologische tests en toetsplantenonderzoeken worden uitgevoerd op kasplanten; elke stengel wordt op ten minste twee plaatsen bemonsterd, waarbij ten minste een jong, volledig geopend blad aan de top van elke stengel wordt genomen en een ouder blad halfweg de stengel; elke stengel moet worden bemonsterd omdat niet-systemische infectie mogelijk is. Voor serologische tests worden geen bladeren van verschillende planten samengevoegd, tenzij het maximaal samen te voegen aantal planten voor de gebruikte methode gevalideerd is; van elke stengel mogen evenwel bladeren worden samengevoegd om zodoende een monster van de plant te bekomen. In geval van toetsplantenonderzoek mogen ten hoogste vijf planten worden samengevoegd met ten minste inoculatie in duplo van toetsplanten.

4.

Als toetsplanten voor het toetsplantenonderzoek als bedoeld in de punten 1 en 2 moeten planten worden genomen die zijn vermeld in de lijst van de Plantenbeschermingsorganisatie voor Europa en het gebied van de Middellandse Zee (EPPO) of andere officieel erkende toetsplanten waarvan is aangetoond dat zij de aanwezigheid van virussen kunnen opsporen.

5.

Alleen rechtstreeks getest materiaal mag uit quarantaine worden vrijgegeven. Wanneer het oog is getoetst mogen alleen de afstammelingen van het getoetste oog worden vrijgegeven. De knol mag niet worden vrijgegeven omdat zich problemen kunnen voordoen met niet-systemische infectie.

1.

Voor alle materiaal moeten kasplanten worden getest zodra zij goed zijn aangeslagen, maar voordat zij bloeien en pollen produceren. Tests op kiemen/in vitro planten/kiemplantjes mogen uitsluitend als voorlopige tests worden beschouwd.

2.

De monsters moeten worden genomen van een volledig geopend blad aan de top van elke stengel van de plant.

3.

Alle voor de tests gebruikte materiaal moet zijn geteeld bij een temperatuur van ten minste 18 °C (bij voorkeur bij een temperatuur van meer dan 20 °C) en met een fotoperiode van ten minste 16 uur.

4.

De tests dienen te worden uitgevoerd door middel van radioactief of niet-radioactief gemerkte cDNA- of RNA-probes, return-PAGE (met zilverkleuring) of RT-PCR.

5.

Voorgesteld wordt om maximaal vijf planten samen te voegen voor probes en return-PAGE. Indien vijf of meer planten worden samengevoegd, moet worden aangetoond dat de resultaten geldig zijn.